试验前请仔细阅读说明书，本产品仅供科研实验使用。
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以下情况不予办理退换货：
1、已超过受理期限的产品，如过保质期。
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3、由于客户没有仔细确认要订购的指标，导致自己的指标定错。
4、产品已使用（质量问题除外）。
NAD激酶（NAD kinase, NADK）试剂盒说明书
分光光度法 50管/24样
注 意：正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定
测定意义：
NADK（EC 2.7.1.23）广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中，是目前所发现的生物体内惟一能够催化NAD+磷酸化生成NADP+的酶，可催化NAD(H)以ATP或无机多聚磷酸[poly(P)]作为磷酰基供体进行磷酸化反应，生成NADP(H)。因此，NAD激酶在合成NADP(H)以及调节NAD(H)与NADP(H)的平衡上具有重要作用。
测定原理：
NADK催化NAD+磷酸化，生成NADP+；NADP+可被6-磷酸葡萄糖脱氢酶还原为NADPH；在340 nm下测定NADPH增加速率。可反映出NADK活性的大小。
需自备的仪器和用品：
可见分光光度计、恒温水浴锅、台式离心机、可调式移液器、1 mL玻璃比色皿和蒸馏水。
试剂的组成和配制：
提取液：液体50 mL×1瓶，4℃保存；
试剂一：液体25 mL×1瓶，4℃保存；
试剂二：液体50 mL×1瓶，4℃保存；
试剂三：粉剂×1瓶，-20 ℃保存；
试剂四：粉剂×1瓶，-20℃保存；
样本测定的准备：
1、细菌、细胞或组织样品的制备：
细菌或培养细胞：先收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清；按照细菌或细胞数量（104个）：提取液体积（mL）为500~1000：1的比例（建议500万细菌或细胞加入1mL提取液），超声波破碎细菌或细胞（冰浴，功率20％或200W，超声3s，间隔10s，重复30次）；8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测。
组织：按照组织质量（g）：提取液体积(mL)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1mL提取液），进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测。
2、血清（浆）样品：直接检测。
测定步骤：
1、分光光度计预热30min以上，调节波长至340nm，蒸馏水调零。
2、将试剂一和试剂二37℃（哺乳动物）或25℃（其它物种）水浴15min以上。
3、工作液Ⅰ的配制：在试剂三中加入12mL试剂一，充分混匀待用；用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融；
工作液Ⅱ的配制：在试剂四中加入45mL试剂二，充分混匀待用；用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融；
4、加样表
| 试剂名称(μL) | 测定孔 | 对照管 |
| 样本 | 100 | 100 |
| 工作液Ⅰ | 400 |
|
| 试剂一 |
| 400 |
充分混匀，37℃（哺乳动物）或25℃（其它物种）水浴15min，立即煮沸
2min（盖紧，防止水分散失）冰浴冷却，10000g，25℃离心10min，取上清
| 上清液 | 200 | 200 |
| 工作液Ⅱ | 800 | 800 |
加完试剂混匀，室温静置15min，340nm下测定吸光值，ΔA=A测定-A对照。
NADK活性计算：
1、血清（浆）NADK活力的计算:
单位的定义：每mL血清（浆）每分钟生成1 nmol的NADP定义为一个酶活力单位。
NADK（nmol/min/mL）＝[ΔA×V反总÷（ε×d）×109]÷V样÷T=53.59×ΔA
2、组织、细菌或细胞中NADK活力的计算:
（1）按样本蛋白浓度计算：
单位的定义：每mg组织蛋白每分钟生成1 nmol NADP定义为一个酶活力单位。
NADK（nmol/min /mg prot）＝[ΔA×V反总÷（ε×d）×109]÷(V样×Cpr) ÷T=53.59×ΔA÷Cpr
（2）按样本鲜重计算：
单位的定义：每g组织每分钟生成1 nmol NADP定义为一个酶活力单位。
NADK（nmol/min /g 鲜重）＝[ΔA×V反总÷（ε×d）×109]÷(W× V样÷V样总) ÷T=53.59×ΔA÷W
（3）按细菌或细胞密度计算：
单位的定义：每1万个细菌或细胞每分钟生成1 nmol NADP定义为一个酶活力单位。
NADK（nmol/min /104 cell）＝[ΔA×V反总÷（ε×d）×109]÷(500×V样÷V样总) ÷T=0.107×ΔA
V反总：反应体系总体积，5×10-4 L；ε：NADPH摩尔消光系数，6.22×103 L / mol /cm；d：比色皿光径，1cm；V样：加入样本体积，0.1 mL；V样总：加入提取液体积，1 mL；T：反应时间，15 min；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；W：样本质量，g；500：细菌或细胞总数，500万。
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