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环氧活化高流速 6B 琼脂糖微球是将环氧基团键合在琼脂糖微球 6FF 上冻干形成的一种活性中间体，可直接偶联配基制备分离介质，用于生物大分子的纯化分离。
1. 外观
本品为白色球状凝胶,无嗅、无味、无肉眼可见杂质。
2. 理化指标
| 项 | 目 | 指标 |
| 配 | 基 | 环氧基 |
| 基 | 质 | 高流速 6%琼脂糖微球 |
| 颗粒形状及大小 | 球形50~160 μm | |
| 配基密度 | 20~40μmol 环氧基/ml 介质 | |
| 最高流速（25℃） | 300 cm/h* | |
| 耐压 | 0.2 MPa | |
| pH 适用范围** | 2~14 | |
|
化学稳定性** | 以下溶液中稳定： | |
*检测条件： 层析柱 16mm×300mm*柱床高 15cm,25℃, 流动相为 0.1mol/LNaCl
**是指偶联配基后的分离介质的性能3．运输
运输中应避免日晒、雨淋、重压，严禁与有毒、有害物品混运。
4. 贮存：
5. 保质期：暂定 2 年。
6. 应用
环氧活化琼脂糖微球FF 是将环氧基团键合在琼脂糖微球 6FF 上冻干形成的一种活性中间体，可直接偶联含氨基、巯基和羟基的配基制备分离介质，用于生物大分子的纯化分离。
下面简要介绍环氧活化琼脂糖微球偶联含氨基配基的使用过程。
6.1 干粉的溶胀
称取一定量的环氧活化高流速琼脂糖微球冻干粉，在蒸馏水中悬浮溶胀（1g 干粉约溶胀为 3～4ml 凝胶），放置大约 1 小时后抽滤，并用约 200ml（PH 7）去离子水洗涤干净其中的添加剂，并在漏斗中抽干。
6.2 配基的偶联
一般配基偶联的过程如下：
（1） 偶联溶剂：可用去离子水、碳酸盐缓冲液和磷酸盐缓冲液。不能用含氨基和其他含亲核试剂的溶液。有时需要有机溶剂溶解配基，如用 50%二甲基甲酰胺和二氧六环等。
（2） 取一定量的配基溶解到偶联用的缓冲溶液中，使其完全溶解，最低浓度为 200μmol
（3） 将溶胀的凝胶悬浮到含有配基的缓冲溶液中，在 20℃~45℃的水浴中摇荡 16 小时。也可以用其他搅拌方法使配基偶联，请勿用磁力搅拌。
（4） 反应完全后，再洗涤掉缓冲液中的多余的配基。
（5） 残余活性基团的消除，将反应完洗涤过的凝胶悬浮到 1mol/L 乙醇胺（PH 8）的溶液中，在 40℃~50℃最少反应 4 小时或者室温反应过夜。
（6） 在反应完后，用含有 0.5mol/LNaCl 的 0.1mol/L 醋酸缓冲液（PH 4.0）和含有0.5mol/LNaCl 的偶联缓冲液（PH 8.3）交替洗涤，至少重复以上循环洗涤 3 次。
6.3 装柱
⑴让所有的材料和试剂达到室温。配制初始缓冲液（平衡液）和洗脱缓冲液。
⑵根据柱子大小取所需量的凝胶，清洗掉溶液，抽干，用初始缓冲液（按凝胶：缓冲液
⑶将柱内及柱子底端用水或缓冲液润湿并保持一小段液位（液面略高于滤膜），务必使 底端无气泡。
⑷用玻璃棒引导匀浆沿着柱内壁一次性倒入柱内，注意勿使产生气泡。打开柱子出液口，使凝胶在柱内自由沉降，连结好柱子顶端柱头。
⑸打开蠕动泵，让缓冲液用使用时流速的 1.33 倍的流速流过，使柱床稳定。用 2~3 倍柱体积的缓冲液平衡柱子。
6.4 平衡
让平衡缓冲液以一定流速流过柱子，到流出液电导和 pH 不变。平衡缓冲液一般是根据需要纯化的蛋白来决定用哪种缓冲液。
6.5 上样
⑴样品用平衡液配制，浑浊的样品要离心和过滤后上样。
⑵一般情况是让目标产品结合在柱子上，用平衡液洗去杂质，再选择一种洗脱液洗下目标产品。
⑶介质对样品组分吸附的程度取决于介质配基的亲和作用、样品的亲和性质、流动相的 组成和温度。
(4)再用缓冲液平衡到流出液电导和 pH 不变。
6.6 洗脱
洗脱液也要根据需要纯化的蛋白决定。
6.7 再生
对于使用之后的凝胶，以 2~3 倍柱体积的 0.1mol/L Tris·HCl+0.5mol/L NaC（l PH=8.5）
6.8 在位清洗
根据偶联的配基选择在位清洗的方法，以洗去柱子污染物同时不伤害柱子为原则。对于一般的污染，用 0.1mol/L NaOH 进行较长时间的清洗，对配基基本没有的影响；当严重污染后，可用 0.5mol/L NaOH 进行短时间的清洗；对于介质中含有其他试剂的，可用含有 8 mol/L 尿素和 6 mol/L 的盐酸胍的溶液进行在位清洗。若有失活蛋白或脂类物质洗不干净，可用非离子表面活性剂如 0.1% Triton 洗涤。
6.9 注意
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